Ктр 3 5 мм: Определение срока беременности по УЗИ в СПб- цена 900 руб.

Содержание

Ключ трубный рычажный КТР-3 (НИЗ) Россия

Главная
Каталог
Слесарный инструмент
Ключи
Ключи трубные рычажные

Артикул:

Скачать фото

Скачать все архивом

Группа товаров: Ручной инструмент
Длина, мм: 500
Бренд: RUSSIA
Максимальное раскрытие губок, мм: 63
Марка стали: 45

Станьте нашим партнером и получите уникальные условия сотрудничества

Стать партнеромВойти в аккаунт

С этим товаром покупают

Перчатки х/б, 10 класс Россия

Перчатка трикотажные с ПВХ точкой, 5 пар в упаковке, БОПП-пакет, 7 класс// Россия

Перчатки х/б, ПВХ покрытие, «Точка», 7 класс Россия

Перчатки х/б, ПВХ покрытие, «Шахматный облив», 5 пар в упаковке, 10 класс Россия

906055

Ящик для инструмента, 284 х 160 х 78 мм, металлический Matrix

906035

Ящик для инструмента, 410 х 154 х 95 мм, металлический Matrix

906025

Ящик для инструмента, 484 х 154 х 165 мм, металлический Matrix

Ящик для инструмента, 430 х 200 х 200 мм, пять секций, металлический Сибртех 90751

Ящик для инструмента, 324 х 165 х 137 мм, 13″, пластик Россия Сибртех

Ящик для инструмента, 410 х 215 х 197 мм, 16″, пластик Россия Сибртех

Ящик для инструмента, 430 х 235 х 250 мм, 18″, пластик Россия Сибртех

Ящик для инструмента, 530 х 275 х 290 мм, 21″, пластик Россия Сибртех

Ящик для инструментов 16”, с органайзерами Сибртех

Ящик для инструментов 18 ”, с органайзерами Сибртех

Ящик для инструментов 21”, с органайзерами Сибртех

Ящик для инструмента 12″, 285 х 155 х 125 мм, пластик, Россия Stels

Ящик для инструмента 17″, 420 х 220 х 180 мм, пластик Россия Stels

Ящик для инструмента 20″, 500 х 260 х 260 мм, пластик Россия Stels

Ящик для инструмента 24″, 590 х 300 х 300 мм, пластик Россия Stels

Ящик для инструмента с металлическими замками 16″ 17. 5 x 21х41 Россия Stels

Ящик для инструмента с металлическими замками 16″ 17.5 x 21х41 Россия Stels

Ящик для инструмента с металлическими замками 20″ 22 x 26 x 51 Россия Stels

Ящик для инструмента с металлическими замками 22″, 28 х 23 см, 5 х 56 см Россия Stels

Ящик для инструментов, усиленный 16″ Stels

Ящик для инструментов, усиленный 19″ Stels

Ящик для инструментов, усиленный 24″ Stels

Ключ разводной, 200 мм, CrV, двухкомпонентная ручка Gross

Ключ разводной, 250 мм, CrV, двухкомпонентная ручка Gross

Ключ разводной, 120 мм, CrV, укороченная ручка Gross

Ключ разводной, 140 мм, CrV, укороченная ручка Gross

Ключ разводной, 160 мм, CrV, укороченная ручка Gross

Ключ разводной, 150 мм, CrV, тонкие губки, защитные насадки Gross

Ключ разводной, 200 мм, CrV, тонкие губки, защитные насадки Gross

Ключ разводной, 250 мм, CrV, тонкие губки, защитные насадки Gross

Ключ разводной, 150 мм Matrix

Ключ разводной, 200 мм Matrix

Ключ разводной, 250 мм Matrix

Ключ разводной, 300 мм Matrix

Ключ разводной, 375 мм Matrix

Ключ разводной, 450 мм Matrix

Ключ разводной, 150 мм, переставная губка, двухкомпонентная рукоятка Matrix

Ключ разводной, 200 мм, переставная губка, двухкомпонентная рукоятка Matrix

Ключ разводной, 250 мм, переставная губка, двухкомпонентная рукоятка Matrix

Ключ разводной, тонкие губки, фосфатированный, двухкомпонентная рукоятка, 150 мм, PRO Matrix

Ключ разводной, тонкие губки, фосфатированный, двухкомпонентная рукоятка, 200 мм, PRO Matrix

Ключ разводной, тонкие губки, фосфатированный, двухкомпонентная рукоятка, 250 мм, PRO Matrix

Ключ разводной, тонкие губки, фосфатированный, двухкомпонентная рукоятка, 300 мм, PRO Matrix

Ключ разводной, 150 мм, Барс

Ключ разводной, 200 мм, Барс

Ключ разводной, 250 мм, Барс

Ключ разводной, 300 мм, Барс

Ключ разводной, 150 мм, никелированный Сибртех

Ключ разводной, 200 мм, никелированный Сибртех

Ключ разводной, 250 мм, никелированный Сибртех

Ключ разводной, 300 мм, никелированный Сибртех

Ключ разводной, 375 мм, никелированный Сибртех

Ключ разводной, 450 мм, никелированный Сибртех

Ключ разводной, 150 мм, тонкие губки, фосфатированый Сибртех

Ключ разводной, 200 мм, тонкие губки, фосфатированый Сибртех

Ключ разводной, 250 мм, тонкие губки, фосфатированый Сибртех

Ключ разводной, 300 мм, тонкие губки, фосфатированый Сибртех

155205

Ключ разводной, 150 мм, хромированный Sparta

155255

Ключ разводной, 200 мм, хромированный Sparta

155305

Ключ разводной, 250 мм, хромированный Sparta

155355

Ключ разводной, 300 мм, хромированный Sparta

155405

Ключ разводной, 375 мм, хромированный Sparta

155455

Ключ разводной, 450 мм, хромированный Sparta

Ключ разводной, 150 мм, двухкомпонентная рукоятка Sparta

Ключ разводной, 200 мм, двухкомпонентная рукоятка Sparta

Ключ разводной, 250 мм, двухкомпонентная рукоятка Sparta

Ключ разводной, 300 мм, двухкомпонентная рукоятка Sparta

Ключ разводной, 150 мм (НИЗ) Россия

Ключ разводной, 250 мм (НИЗ) Россия

Канавочник КТР-25 по цене от 98600 руб

Каталог
Справочные материалы
О компании
Доставка и оплата
Контакты

Артикул № КТР-25

Купить

Получить коммерческое предложение

Описание
Аналоги
Расходные материалы и аксессуары

Канавочник КТР-25 применяется для нарезания кольцевых уплотнительных канавок в отверстиях трубных решеток перед установкой и развальцовкой труб с целью повышения герметичности и прочности соединений.
Для обработки отверстий трубных решеток канавочник устанавливается в шпиндель радиально-сверлильного станка. Ширина канавок и расстояние между ними определяются формой резца.

Глубина «Н» канавок и расстояние «А» от наружной поверхности трубной решетки до первой канавки регулируются в диапазонах. Цифровой индекс указывает на номинальный наружный диаметр труб, под которые обрабатываются отверстия трубной решетки.

Канавочник КТР-51 161 500 ₺
Канавочник КТР-25 98 600 ₺
Канавочник КТР-20 98 600 ₺
Канавочник КТР-19 98 600 ₺
Сменный резец к канавочнику КТР 13 200 ₺
Канавочник КТР-32 132 000 ₺
Канавочник КТР-38 132 000 ₺
Канавочник КТР-60 161 500 ₺
Канавочник КТР-16 98 600 ₺
Канавочник КТР-57 161 500 ₺
Канавочник КТР-22 98 600 ₺
Канавочник КТР-30 132 000 ₺

Сменный резец к канавочнику КТР 13 200 ₺

Получить подробную информацию по Канавочник КТР-25 и купить по низкой цене Вы можете: позвонив нам по телефону +7 804 333-20-03 Бесплатно по РФ, отправив заявку на электронную почту zakaz@tmh. su либо поместив товар в «Вашу корзину» и оформив заказ.

Все производители

KTR 030A a KTR 030F ДАТЧИКИ ТЕМПЕРАТУРЫ С КОРПУСОМ ∅ 4 ММ, РЕЗЬБА M10x1,5

KTR 030A и KTR 030F ДАТЧИКИ ТЕМПЕРАТУРЫ С КОРПУСОМ ∅ 4 ММ, РЕЗЬБОЙ M10x1,5

ВВВ

—%>

Датчики температуры сопротивления КТР 030А и КТР 030Ф предназначены для измерения температуры газообразных или жидких веществ. В сегменте применения Железнодорожные транспортные средства предназначены для измерения температуры воздуха в кондиционерах вагонов и пассажирских салонов поездов с целью контроля температуры в помещениях для пассажиров.

Температурный диапазон составляет от -30 °C до 150 °C, и эти пределы не должны превышаться даже на короткое время. Эти датчики могут быть использованы для любых систем управления, совместимых с типами чувствительных элементов, перечисленных в таблице технических параметров. Эти датчики соответствуют классу защиты IP 67 согласно стандарту EN 60529 с поправками. Конструкция штока позволяет использовать датчики для непосредственного измерения температуры в трубопроводах и в то же время обеспечивает быструю реакцию датчика на изменение температуры по сравнению с датчиками с защитной гильзой.

Датчики предназначены для работы в химически неагрессивной среде.

ИСПЫТАНИЯ, ДЕКЛАРАЦИЯ, КАЛИБРОВКИ

Типовые испытания проводятся уполномоченным органом в соответствии со стандартом EN 50155 с поправками, Применение на железных дорогах. Электронное оборудование, используемое на подвижном составе, Ст. 12.2.9, 12. 2.11

Испытание изоляции в соответствии с EN 50155 с поправками
Испытания на удар и вибрацию в соответствии с EN 61373 с поправками

Продукт соответствует параметрам в соответствии с EN 45545-2 с поправками, Противопожарная защита на железнодорожном транспорте. Часть 2. Требования к огнестойкости материалов и компонентов.

Производитель предоставляет Декларацию соответствия ЕС .
Калибровка – Заключительный метрологический контроль – сравнение с эталонами или рабочими инструментами – проводится для всей продукции. Непрерывность эталонов и рабочих измерительных приборов обеспечивается по смыслу статьи 5 Закона № 505/19.90 по метрологии. Производитель предлагает возможность поставки датчиков, откалиброванных в лаборатории SENSIT s.r.o. (в соответствии с требованиями стандарта EN ISO/IEC 17025 с поправками) или в аккредитованной лаборатории.

Технические параметры

Тип датчика	КТР 030А	КТР 030F
Тип чувствительного элемента	все типы
Диапазон температур	от -30 °C до 150 °C (может быть ограничено типом датчика, см. гарантийную документацию)
Пылевлагозащита	IP 67 в соответствии с EN 60529 с поправками
Диаметр корпуса	4 ± 0,1 мм	5,7± 0,1 мм
Длина кейса L	от 10 до 100 мм
Резьба/ОК	M 10 x 1,5 / OK 12	М 12 х 1,5 / OK
Материал корпуса	нержавеющая сталь DIN 1. 4301
Вводный кабель	экранированный силикон 2×0,15 мм ² / 4×0,15 мм ²	экранированный силикон 2×0,5 мм2 / 4×0,25 мм2
Сопротивление провода	0,254 Ом	0,07 Ом
	за 1 м кабеля для 2-проводного подключения
Время отклика	τ0,5 < 5 с	τ0,5 < 73 с
	(в проточной воде при 0,4 мс-1)
Сопротивление изоляции	>200 МОм при 500 В _DC, температура 25 °C ± 3 °C, влажность < 80 %
Средний срок службы ≈ MTTF*	1,2 x 10 ⁵ часов

* В условиях окружающей среды и эксплуатации, указанных в утвержденной методике испытаний.

Испытания
Испытания на удар и вибрацию	категория 2 в соответствии с EN 61373 с поправками
Проверка изоляции	4 кВ постоянного тока в течение 1 минуты в соответствии с EN 50155 с поправками
Огнестойкость	в соответствии с EN 45545 с поправками

N примечание: Производитель оставляет за собой право вносить изменения в конструкцию и технические характеристики продукции. Для получения актуальной информации всегда обращайтесь к своему дилеру.

Размер корпуса

Схема замены

Modifikace

ДЛЯ СТАНДАРТНЫХ ДАТЧИКОВ ВОЗМОЖНО ИЗМЕНИТЬ СЛЕДУЮЩИЕ ПАРАМЕТРЫ:

конструкция штока с изменяемой длиной –

— возможность смены резьбы

— Класс точности А (за исключением Ni 10000/5000, Ni 10000/6180, T1 = Ni 2226, NTC 20 кОм)

— возможность установки нестандартных датчиков температуры (DALLAS, TSiC, KTY, SMT, TC и т. д.)

— возможность установки двух чувствительных элементов

Образец к продукту:

Soubory ke stažení

231_999.pdf

Отеврит Станаут

Две маннозилтрансферазы KTR ответственны за биосинтез маннанов клеточной стенки и контроль поляризованного роста у Aspergillus fumigatus

1. Goto M. 2007. O-гликозилирование белков у грибов: разнообразные структуры и множественные функции. Биоски Биотехнолог Биохим 71:1415–1427. doi: 10.1271/bbb.70080. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

2. Дешпанде Н., Уилкинс М.Р., Пакер Н., Невалайнен Х. 2008. Пути гликозилирования белков у мицелиальных грибов. гликобиология 18: 626–637. дои: 10.1093/гликоб/cwn044. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

3. Mouyna I, Kniemeyer O, Jank T, Loussert C, Mellado E, Aimanianda V, Beauvais A, Wartenberg D, Sarfati J, Bayry J, Prévost M-C, Brakhage AA, Страль С. , Уэрре М., Латже Ж-П. 2010. Члены семейства белков O-маннозилтрансфераз в Aspergillus fumigatus по-разному влияют на рост, морфогенез и жизнеспособность. Мол Микробиол 76:1205–1221. doi: 10.1111/j.1365-2958.2010.07164.x. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

4. Вагенер Дж., Эхтенахер Б., Роде М., Коц А., Краппманн С., Хеземанн Дж., Эбель Ф. 2008. Предполагаемая α-1,2-маннозилтрансфераза AfMnt1 условно-патогенного грибкового патогена Aspergillus fumigatus необходима для стабильности клеточной стенки и полной вирулентности. эукариотическая клетка 7: 1661–1673. doi: 10.1128/EC.00221-08. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

5. Hall RA, Bates S, Lenardon MD, MacCallum DM, Wagener J, Lowman DW, Kruppa MD, Williams DL, Odds FC, Brown AJP, Gow НАР. 2013. Семейство маннозилтрансфераз Mnn2 модулирует длину маннопротеиновых фибрилл, иммунное распознавание и вирулентность Candida albicans . PLoS Патог 9:e1003276. doi: 10.1371/journal. ppat.1003276. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

6. Гото М., Харада Ю., Ока Т., Мацумото С., Такегава К., Фурукава К. 2009. Белковые O-маннозилтрансферазы B и C поддерживают развитие и дифференцировку гиф у Aspergillus nidulans . эукариотическая клетка 8:1465–1474. doi: 10.1128/EC.00371-08. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

7. Fontaine T, Simenel C, Dubreucq G, Adam O, Delepierre M, Lemoine J, Vorgias CE, Diaquin M, Latgé JP. 2000. Молекулярная организация щелоченерастворимой фракции 9Клеточная стенка 0278 Aspergillus fumigatus . J Биол Хим 275:27594–27607. doi: 10.1074/jbc.M909975199. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

8. Ламот Ф. 2016. Тестирование галактоманнана и 1,3-β-d-глюкана для диагностики инвазивного аспергиллеза. J Fungi (Базель) 2:22. doi: 10.3390/jof2030022. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

9. Chai LYA, Vonk AG, Kullberg BJ, Verweij PE, Verschueren I, van der Meer JWM, Joosten LAB, Latgé J-P, Netea MG. 2011. Аспергилл фумигатус 9Компоненты клеточной стенки 0279 по-разному модулируют ответы TLR2 и TLR4 хозяина. микробы заражают 13:151–159. doi: 10.1016/j.micinf.2010.10.005. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

10. Bozza S, Clavaud C, Giovannini G, Fontaine T, Beauvais A, Sarfati J, D’Angelo C, Perruccio K, Bonifazi P, Zagarella S, Moretti S, Bistoni Ф, Латге Ж-П, Романи Л. 2009. Иммунное зондирование белков, гликолипидов и полисахаридов Aspergillus fumigatus и влияние на иммунитет Th и вакцинацию. Дж Иммунол 183:2407–2414. дои: 10.4049/jиммунол.01. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

11. Манро С. 2001. Что могут рассказать нам дрожжи о N-связанном гликозилировании в аппарате Гольджи. FEBS Lett 498: 223–227. [PubMed] [Google Scholar]

12. Latgé JP, Kobayashi H, Debeaupuis JP, Diaquin M, Sarfati J, Wieruszeski JM, Parra E, Bouchara JP, Fournet B. 1994. Химическая и иммунологическая характеристика внеклеточного галактоманнана Aspergillus fumigatus . Заразить иммунитет 62:5424–5433. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

13. Генри К., Фонтейн Т., Хеддерготт С., Робине П., Айманианда В., Бо Р., Бове А., Муйна И., Прево М.-К., Феккар А., Чжао И., Перлин Д., Латге Ж.-П. 2016. Биосинтез маннана клеточной стенки в конидии и мицелии Aspergillus fumigatus . Клеточная микробиология 18:1881–1891. дои: 10.1111/см.12665. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

14. Lambou K, Perkhofer S, Fontaine T, Latge J-P. 2010. Сравнительный функциональный анализ семейств маннозилтрансфераз OCh2 в Aspergillus fumigatus и Saccharomyces cerevisiae . Дрожжи 27:625–636. doi: 10.1002/yea.1798. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

15. Lussier M, Sdicu AM, Bussereau F, Jacquet M, Bussey H. 1997. Маннозилтрансферазы Ktr1p, Ktr3p и Kre2p/Mnt1p участвуют в выработке O- и N-связанных углеводных цепей дрожжей. J Биол Хим 272:15527–15531.] [PubMed] [Google Scholar]

16. Mouyna I, Aimanianda V, Hartl L, Prevost M-C, Sismeiro O, Dillies MA, Jagla B, Legendre R, Coppee J-Y, Latgé J-P. 2016. β-(1,3)-глюканазы семейства Gh26 и GH81 в Aspergillus fumigatus необходимы для морфогенеза конидиальной клеточной стенки. Клеточная микробиология 18:1285–1293. дои: 10.1111/см.12630. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

17. Hartmann T, Dümig M, Jaber BM, Szewczyk E, Olbermann P, Morschhäuser J, Krappmann S. 2010. Проверка самоисключающегося маркера в патогене человека Aspergillus fumigatus с использованием системы рекомбинации бета-рек/шесть сайтов. Appl Environ Microbiol 76:6313–6317. doi: 10.1128/AEM.00882-10. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

18. Морель В., Бернар М., Дебопюи Ж.-П., Буитраго М., Табуре М., Латже Ж.-П. 2005. Галактоманнопротеины Aspergillus fumigatus . эукариотическая клетка 4: 1308–1316. doi: 10.1128/EC.4.7.1308-1316.2005. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

19. Krüger AT, Engel J, Buettner FFR, Routier FH. 2016. Aspergillus fumigatus Cap59-подобный белок А участвует в α1,3-маннозилировании GPI-якорей. гликобиология 26:30–38. doi: 10.1093/гликоб/cwv078. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

20. Ризон А.Дж., Делл А., Ромеро П.А., Херскович А. 1991. Специфичность маннозилтрансферазы, которая инициирует образование внешней цепи у Saccharomyces cerevisiae . гликобиология 1: 387–391. [PubMed] [Google Scholar]

21. Родионов Д., Ромеро П.А., Бергуис А.М., Херскович А. 2009. Экспрессия и очистка рекомбинантного M-Pol I из Saccharomyces cerevisiae с активностью α-1,6 маннозилполимеразы. Protein Expr Purif 66:1–6. doi: 10.1016/j.pep.2009.02.013. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

22. Юнгманн Дж., Манро С. 1998. Мультибелковые комплексы в цис-Гольджи Saccharomyces cerevisiae с активностью альфа-1,6-маннозилтрансферазы. ЭМБО J 17:423–434. doi: 10.1093/emboj/17.2.423. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

23. Jungmann J, Rayner JC, Munro S. 1999. Белок Saccharomyces cerevisiae Mnn10p/Bed1p является субъединицей маннозилтрансферазного комплекса Гольджи. J Биол Хим 274: 6579–6585. [PubMed] [Академия Google]

24. Штольц Дж., Манро С. 2002. Компоненты маннозилтрансферазного комплекса M-Pol I Saccharomyces cerevisiae выполняют различные функции в синтезе маннана. J Биол Хим 277:44801–44808. doi: 10.1074/jbc.M208023200. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

25. Wang JJ, Qiu L, Cai Q, Ying S-H, Feng M-G. 2014. Три α-1,2-маннозилтрансферазы по-разному способствуют конидиации, целостности клеточной стенки, устойчивости к множественным стрессам и вирулентности Beauveria bassiana 9.0279 . Грибковый Генет Биол 70:1–10. doi: 10.1016/j.fgb.2014.06.010. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

26. Muszkieta L, Aimanianda V, Mellado E, Gribaldo S, Alcàzar-Fuoli L, Szewczyk E, Prevost MC, Latgé J-P. 2014. Расшифровка роли семейств хитинсинтаз 1 и 2 в росте in vivo и in vitro Aspergillus fumigatus путем множественной делеции гена. Клеточная микробиология 16: 1784–1805. дои: 10.1111/см. 12326. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

27. Mouyna I, Fontaine T, Vai M, Monod M, Fonzi WA, Diaquin M, Popolo L, Hartland RP, Latgé JP. 2000. Гликозилфосфатидилинозитол-заякоренные глюканозилтрансферазы играют активную роль в биосинтезе клеточной стенки грибов. J Биол Хим 275:14882–14889. [PubMed] [Google Scholar]

28. Gastebois A, Fontaine T, Latgé J-P, Mouyna I. 2010. β(1-3)Glucanosyltransferase Gel4p необходим для Aspergillus fumigatus . эукариотическая клетка 9: 1294–1298. doi: 10.1128/EC.00107-10. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

29. Такэсита Н. 2016. Координированный процесс поляризованного роста у мицелиальных грибов. Биоски Биотехнолог Биохим 80: 1693–1699. дои: 10.1080/09168451.2016.1179092. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

30. Riquelme M, Aguirre J, Bartnicki-García S, Braus GH, Feldbrügge M, Fleig U, Hansberg W, Herrera-Estrella A, Kämper J, Kück U, Mouriño- Перес Р.Р., Такешита Н., Фишер Р. 2018. Морфогенез грибов, от поляризованного роста гиф до сложных структур размножения и заражения. Микробиол Мол Биол Рев 82:e00068-17. doi: 10.1128/MMBR.00068-17. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

31. Харрис С.Д., Момани М. 2004. Полярность мицелиальных грибов: выход за рамки парадигмы дрожжей. Грибковый Генет Биол 41:391–400. doi: 10.1016/j.fgb.2003.11.007. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

32. Oda K, Bignell E, Kang SE, Momany M. 2017. Уровни транскриптов модуля Aspergillus fumigatus Cdc42, поляризомы и генов септина мало изменяются от состояния покоя до установления полярности. Мед Микол 55:445–452. дои: 10.1093/mmy/myw085. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

33. Дихтл К., Самантарай С., Айманианда В., Чжу З., Прево М.-К., Латге Дж.-П., Эбель Ф., Вагенер Дж. 2015. Aspergillus fumigatus лишенный клеточной стенки β-1,3-глюкан является жизнеспособным, массово выделяет галактоманнан и уничтожается ингибиторами образования перегородки. Мол Микробиол 95:458–471. дои: 10.1111/mmi.12877. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

34. Henry C, Latgé J-P, Beauvais A. 2012. α1,3-глюканы незаменимы в Aspergillus fumigatus. эукариотическая клетка 11:26–29. doi: 10.1128/EC.05270-11. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

35. Gravelat FN, Beauvais A, Liu H, Lee MJ, Snarr BD, Chen D, Xu W, Kravtsov I, Hoareau CMQ, Vanier G, Urb M, Campoli P, Al Abdallah Q, Lehoux M, Chabot JC, Ouimet MC, Baptista SD, Fritz JH, Nierman WC, Latgé JP, Mitchell AP, Filler SG, Fontaine T, Sheppard DC. 2013. Галактозаминогалактан Aspergillus опосредует адгезию к компонентам хозяина и скрывает β-глюкан гиф от иммунной системы. PLoS Патог 9:e1003575. doi: 10.1371/journal.ppat.1003575. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

36. Самар Д., Килер Дж. Б., Клуттс Дж. С. 2015. Идентификация и удаление Tft1, предполагаемой гликозилтрансферазы, необходимой для синтеза β-1,3;1,4-глюкана клеточной стенки у Aspergillus fumigatus . PLoS Один 10:e0117336. doi: 10.1371/journal.pone.0117336. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

37. Komachi Y, Hatakeyama S, Motomatsu H, Futagami T, Kizjakina K, Sobrado P, Ekino K, Takegawa K, Goto M, Nomura Y, Oka Т. 2013. gfsA кодирует новую галактофуранозилтрансферазу, участвующую в биосинтезе галактофуранозного антигена О-гликана в Aspergillus nidulans и A. fumigatus . Мол Микробиол 90:1054–1073. doi: 10.1111/mmi.12416. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

38. Катафути Ю., Ли К., Танака Ю., Шинозука С., Кавамицу Ю., Изуми М., Экино К., Мизуки К., Такегава К., Сибата Н., Гото М, Номура Ю, Охта К, Ока Т. 2017. GfsA представляет собой β1,5-галактофуранозилтрансферазу, участвующую в биосинтезе боковой цепи галактофурана галактоманнана грибкового типа в Aspergillus fumigatus 9.0279 . гликобиология 27: 568–581. doi: 10.1093/гликоб/cwx028. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

39. Lamarre C, Beau R, Balloy V, Fontaine T, Hoi JWS, Guadagnini S, Berkova N, Chignard M, Beauvais A, Latgé J-P. 2009. Галактофураноза ослабляет клеточную адгезию Aspergillus fumigatus . Клеточная микробиология 11: 1612–1623. doi: 10.1111/j.1462-5822.2009.01352.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

40. Engel J, Schmalhorst PS, Routier FH. 2012. Для биосинтеза полисахарида галактоманнана клеточной стенки грибов требуется внутрипросветная ГДФ-манноза. J Биол Хим 287:44418–44424. дои: 10.1074/jbc.M112.398321. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

41. Lussier M, Sdicu AM, Bussey H. 1999. Семейства маннозилтрансфераз KTR и MNN1 Saccharomyces cerevisiae . Биохим Биофиз Акта 1426: 323–334. [PubMed] [Google Scholar]

42. Rayner JC, Munro S. 1998. Идентификация маннозилтрансфераз MNN2 и MNN5, необходимых для формирования и удлинения маннозных ветвей маннанов внешней цепи Saccharomyces cerevisiae . J Биол Хим 273:26836–26843. [PubMed] [Академия Google]

43. Сфихи-Луалия Г., Юрто Т., Фабр Э., Фраден С., Мее А., Пурсело М. , Маес Э., Букарт Дж., Малле Дж.-М., Пулен Д., Дельплас Ф., Герардель Ю. 2016. Candida albicans β-1,2-маннозилтрансфераза Bmt3 вызывает удлинение фосфопептидоманнана клеточной стенки. гликобиология 26:203–214. doi: 10.1093/гликоб/cwv094. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

44. da Silva Ferreira ME, Kress MR, Savoldi M, Goldman MH, Härtl A, Heinekamp T, Brakhage AA, Goldman GH. 2006. Мутант akuBKU80, лишенный негомологичного соединения концов, является мощным инструментом для анализа патогенности Aspergillus fumigatus. эукариотическая клетка 5:207–211. doi: 10.1128/EC.5.1.207-211.2006. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

45. Коув Диджей. 1966 год. Индукция и репрессия нитратредуктазы у гриба Aspergillus nidulans . Биохим Биофиз Акта 113:51–56. [PubMed] [Google Scholar]

46. Girardin H, Latgé JP, Srikantha T, Morrow B, Soll DR. 1993. Разработка ДНК-зондов для снятия отпечатков пальцев Aspergillus fumigatus . Джей Клин Микробиол 31: 1547–1554. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

47. Сезонов Г., Жозеле-Пти Д., Д’Ари Р. 2007. Кишечная палочка физиология в бульоне Луриа-Бертани. J Бактериол 189:8746–8749. дои: 10.1128/JB.01368-07. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

48. Clavaud C, Beauvais A, Barbin L, Munier-Lehmann H, Latgé J-P. 2012. Состав питательной среды влияет на метаболизм β-1,3-глюканов Aspergillus fumigatus и противогрибковую активность ингибиторов синтеза β-1,3-глюканов. Противомикробные агенты Chemother 56:3428–3431. doi: 10.1128/AAC.05661-11. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

49. Дюбуа М., Жиль К.А., Гамильтон Дж.К., Реберс П.А., Смит Ф. 1956. Колориметрический метод определения сахаров и родственных им веществ. Анальная химия 28:350–356. doi: 10.1021/ac60111a017. [CrossRef] [Google Scholar]

50. Stalhberger T, Simenel C, Clavaud C, Eijsink VGH, Jourdain R, Delepierre M, Latgé J-P, Breton L, Fontaine T. 2014. Химическая организация полисахаридного ядра клеточной стенки Malassezia Restricta . J Биол Хим 289:12647–12656. doi: 10.1074/jbc.M113.547034. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

51. Морель В., Фаид В., Чират Ф., Михальски Дж.-К. 2009. Анализ N- и O-связанных гликанов из гликопротеинов с помощью масс-спектрометрии MALDI-TOF. Методы Мол Биол 534:5–21. doi: 10.1007/978-1-59745-022-5_1. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

52. Striebeck A, Robinson DA, Schüttelkopf AW, van Aalten DMF. 2013. Mnn9 дрожжей является одновременно праймирующей гликозилтрансферазой и аллостерическим активатором биосинтеза маннана. Открытая биология 3:130022. doi: 10.1098/rsob.130022. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

53. Хилл К., Бун С., Гебл М., Пучча Р., Сиду А.М., Бусси Х. 1992. Yeast Kre2 определяет новое семейство генов, кодирующих вероятные секреторные белки, и требуется для правильного N-гликозилирования белков. Генетика 130: 273–283.

Living
Translation
Перевод без лишних слов

Ключ трубный рычажный КТР-3 (НИЗ) Россия

С этим товаром покупают

Похожие товары

Канавочник КТР-25 по цене от 98600 руб

KTR 030A a KTR 030F ДАТЧИКИ ТЕМПЕРАТУРЫ С КОРПУСОМ ∅ 4 ММ, РЕЗЬБА M10x1,5

Технические параметры

Размер корпуса

Схема замены

Modifikace

Soubory ke stažení

Две маннозилтрансферазы KTR ответственны за биосинтез маннанов клеточной стенки и контроль поляризованного роста у Aspergillus fumigatus

Добавить комментарий Отменить ответ

Архивы

Рубрики

Мета